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學會正確地進行細胞培養是細胞實驗的基礎，養好細胞是很多實驗成功的關鍵。
然而，對于養細胞的人來說，真的是不想看到細胞的污染。
細胞的污染將直接導致實驗材料的不純凈，造成數據的錯誤，及后續實驗結果的不可靠。
因此，細胞的污染一旦出現，往往代表著實驗按下暫停鍵，又要重復進行前面的細胞獲取和培養實驗，很可能幾個月的埋頭苦干就此白費。
細胞培養中的常見污染
細胞污染是一個很廣的范圍，微生物的種類更是各種各樣，不同的污染的原因不同處理也不同，因此掌握對常見細胞污染的識別至關重要。
細胞培養中常見的生物污染類型有細菌污染、支原體污染、黑膠蟲污染、真菌污染、病毒污染以及交叉污染等污染。
每一種污染都有各自的特點。如細菌和霉菌增殖迅速，短時間就對細胞造成明顯傷害；而支原體和病毒對細胞的影響則是一種緩慢長期的過程。
污染的預防
微生物污染在細胞培養中是非常常見的，也是令人頭大的一件事情。而預防是防止細胞培養過程中發生污染的最好辦法。只有預防工作做在前，才能將發生污染的可能性降到最小程度。
根據統計培養細胞產生的污染源，常常來自于不潔的環境和不規范的實驗操作，比如受污染的培養基、試劑或儀器。因此，一般預防可從以下幾方面著手：
（1）在培養液中添加抗生素。
可以在培養基中事先加入雙抗（硫酸鏈霉素和氨芐青霉素）。但雙抗有時會影響細胞的狀態，所以在做轉染、檢測細胞某項指標前一定要撤去雙抗，以避免影響實驗結果。
（2）從消毒滅菌著手
①細胞培養所用物品清洗、消毒要徹底，各種溶液滅菌除菌要仔細，并在無菌試驗陰性后才能使用。
玻璃吸管和玻璃培養瓶的消毒：1)高壓蒸汽滅菌15分鐘以上；2)干烤消毒140℃ 2小時以上。
培養基(pH7.2)和血清配制好后要做無菌試驗：將血清按10%加入培養基內，用無菌的玻璃離心管或玻璃瓶取完全培養基5-10ml置培養箱內培養2-3天，肉眼見無渾濁或沉淀等異物。分裝后置4℃保存。
消化液(pH7.8)或其它加入液，應用高壓蒸汽滅菌或一次性無菌濾器過濾除菌，分裝成置-20℃保存。
②操作室及剩余的無菌器材要定期清潔消毒滅菌。
定期清洗或更換超凈臺過濾膜、預濾網。
CO2培養箱的清潔是較易被忽視的地方，應1-2個月對培養箱定期進行清潔消毒。先用75%酒精擦拭培養箱內壁、隔板、水盤2-3次，用雙蒸水清洗，再用酒精棉球擦拭一遍，最后紫外燈照射1h以上或進行高溫高壓滅菌處理。水盤內加入無菌水（應每周更換），待培養箱內溫度、濕度、CO2濃度穩定后再放入細胞。
在細胞間內準備專用的儀器如離心機，移液器，水浴鍋等，并定期進行消毒，減少細胞污染的可能性。
③實驗環境的徹底消毒
甲醛熏蒸法：甲醛是一種廣譜滅菌劑，其水溶液和氣體對各種細菌、芽孢及真菌等微生物均有殺滅作用。
實驗環境紫外照射 15~30 min 滅菌
（3）規劃實驗操作
雖然，養細胞的步驟很簡單無非是換液、傳代、凍存、復蘇。但是具體有好多小細節需要注意....
進入實驗室環境時，佩戴好口罩及手套，穿上潔凈實驗服，避免灰塵或唾液進入培養物中。
超凈臺用紫外燈照射30-60min，并開啟超凈臺風機運轉5-10min，然后用75%酒精球擦拭超凈臺臺面，再開始實驗操作。
進入超凈臺前應用75%酒精對雙手及手腕進行全面擦拭，確保除菌完全。
實驗用品用75%酒精擦拭后才能放入超凈臺內。生物安全柜和超凈工作臺里的東西能少盡少。東西過多會干擾氣流，反而更不安全，并且在物品的擺放要有一定的順序分區要規劃好。這樣細胞在生物安全柜或者超凈臺才能安全。
操作動作要輕，必須在火焰周圍無菌區內打開瓶口，并將瓶口轉動燒灼。操作時盡量不要說話，若打噴嚏或咳嗽應轉向背面。
操作時小心取用無菌物品，應避免污染。勿碰觸吸管尖頭，不小心碰觸后應立即更換；手及物品不要在暴露的瓶口上方來往，容器打開后，傾斜45度操作，操作完成后及時蓋上瓶蓋。
操作時要常更換吸管，一旦發現吸管口接觸了手和其他污染物品應棄去。實驗完畢用消毒水浸泡的紗布擦臺面。
實驗用品用完應移出超凈臺，以利于空氣流通。
實驗完成后用75%酒精擦拭超凈臺臺面。
（4）防止細胞交叉污染
在進行多種細胞培養操作時，所用器具要嚴格區分，即使不同細胞使用相同的培養基也不要共享同一瓶培養基，避免細胞間的交叉污染。
每次操作最好只處理一種細胞，多種細胞多種操作一起進行時易發生不同細胞間的污染；
在進行換液或傳代操作時，注射器和滴管不要觸及細胞培養瓶瓶口，以免把細胞帶到培養液中污染其他細胞。
（5）所有新購入或接入的細胞，必須及時保種凍存，一旦發生污染可重新復蘇細胞，繼續培養，這是抵御污染最直接有效的辦法。
養好細胞的方法就一種，就是細心，在操作上下功夫
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